諾禾 實驗篇之螢光定量 PCR(上)

2021-10-06 08:25:29 字數 2397 閱讀 3905

q:要把 qpcr 實驗做,統共分幾步?

a:三步!

q:哪三步?

a:前期準備、中期操作、後期剖析!

一、qpcr 實驗前期準備

前期準備主要是提取、反轉錄和引物設計區域性,我們來逐一分享。

rna 提取留意事項

首先理解一下,rna 抽提準繩:保證 rna 的一級構造、無其它物質的汙染、得率高、掩蓋一切轉錄本。再比擬一下 trizol 提取和試劑盒提取,trizol 提取相對來說耗時長、含有害化學物質、純度低、rna 完好度不高;而試劑盒提取的優點是效率高、純度高、完好度高,各位可依據實踐科研狀況選擇操作辦法。

rna 提取留意事項:

① 運用無 rnase 的塑料製品和槍頭,玻璃器皿要消毒,防止穿插汙染;運用效能較好的移液器,如 eppendorf、thermo 等;

② depc 有劇毒,當心配製;配製溶液應運用無 rnase 的水;

③ 操作人員應戴一次性口罩和手套,實驗過程中要勤換手套;

④ 樣品應防止重複凍融,否則影響提取 rna 提獲得率和質量;

⑤ 若下游實驗對 dna 十分敏感,可用不含 rnase 的 dnase i 對 rna 停止處置。

反轉錄留意事項

秉承防止 rna 被汙染和降解的準繩,依照產品闡明書停止即可,細緻實驗操作以及留意事項可參照之前已推出文章? 乾貨 | 實驗篇之rt-pcr,此文對反轉錄過程的引物設計和留意事項給出了較明白的提示。

qpcr 引物設計留意事項

qpcr 過程中需求運用基因特異性引物擴增,從而剖析目的基因表達量。

① 引薦運用軟體 primer premier 5.0;

② qpcr 過程中運用引物長度引薦 25bp ,擴增產物長度 150bp ,可在 100bp-300bp 之間;

③ 正向引物和反向引物的 tm 值相差不宜超越2℃,tm 值在 60℃-65℃ 之間為佳;

④ 引物鹼基散布要平均,防止呈現連續的4個相同鹼基,gc 含量控制在50%左右,3』端最後乙個鹼基最好為 g 或 c;

⑤ 引物內部或者正反兩條引物間最好防止呈現有3個鹼基以上的互補序列;

⑥ 引物特異性需求用 ncbi blast 程式停止核對。防止引物3』端有2個鹼基以上的非特異性互補;

⑦ 引物設計完成後需停止擴增效率檢測,將擴增效率相同的引物用於定量比擬剖析。

實驗辦法的選擇

兩步法:退火與延伸相同溫度,最高能夠到達72℃(很少採用),常用60℃,此溫度下擴增引物二聚體和錯配等擴增干擾較少,特異性高;每個迴圈時間較短,節約時間本錢。

三步法:合適需求較高退火溫度的引物,取得相對嚴謹的資料。

前期準備終了,我們就能夠停止接下來的實驗了,為了防止踩到坑里,請認真閱讀!

二、qpcr 實驗中期操作

中期操作主要分為試劑的儲存、模板製備、體系配製、實驗程式設定和內參選擇幾個區域性,詳細內容如下:

試劑貯存

-20℃ 避光長期貯存,防止重複凍融,運用前充沛混勻,但要防止產生氣泡。區域性試劑凍結後可能呈現絮狀物質,4℃ 放置並上下顛倒混勻至溶液廓清,不影響試劑效能。

模板的製備

通常 1µg rna 的反轉錄產物需求稀釋10倍左右,以減輕 rna 對 pcr 擴增的抑止。梯度稀釋時,ct 值落在15-28範圍的稀釋倍數作為原始模板稀釋度,在此根底上停止5-10倍稀釋。模板為 cdna 原液時,上樣量不超越 qpcr 反響總體積的1/10。

體系配製

① 請於超淨工作台內配製,並運用無核酸酶殘留的槍頭、反響管;引薦運用帶濾芯的槍頭,防止穿插汙染和氣溶膠汙染。

② 引薦 10μl(q225、novo max100)、20μl、50μl 體系;將引物和 qpcr mix 混合配成大致系,混合平均,為防止誤差,可多配製1-2個加樣孔的量,保證體系穩定性。

③ 通常引物終濃度為 0.2μm,也能夠依據狀況在 0.1-1.0μm 之間停止調整。

實驗程式設定

① 預變性引薦時間5min,依據不同模板和引物的詳細狀況可恰當縮短至2min。此外,依據不同的廠家的產品能夠有對應的預變性時間。

② 退火溫度依據引物和目的基因的長度恰當調整。

③ 儀器需定期校準,此處整理不同 rox 適用機型,給各位小同伴參考。

表1 不同螢光染料對應機型

內參的選擇

內參基因通常指各種管家基因,各類管家基因在生物體各類細胞中都表達。理想的內參基因可在各類細胞或組織、各種實驗條件下恆定表達。但是不同物種、不同組織的管家基因表達存在特異性,目前還未發現完整理想的內參。下表是已報道的區域性物種的 qpcr 內參基因,僅供參考。

表2 已報道區域性物種的 qpcr 內參基因

假如**中的資料無法滿足您的需求,我們再支一招!

如何挑選內參基因?

首先能夠選擇多個內參基因作為校正規範,再者能夠運用 genorm、normfinder 和 bestkeeper 比擬內參基因表達的穩定性,運用軟體 genorm、基因晶元資料和 est 資料庫挑選內參基因。

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